Mikrobiologia - ćwiczenia.pdf

(120 KB) Pobierz

Wrocław, 2014-09-23

PROGRAM

ĆWICZEŃ

Z MIKROBIOLOGII DLA STUDENTÓW II ROKU WYDZIAŁU

LEKARSKIEGO W ROKU AKADEMICKIM 2014/2015 semestr zimowy

Ćwiczenia ćwiczeń

z mikrobiologii odbywają się w sali

ćwiczeń

Katedry i Zakładu

Mikrobiologii Uniwersytetu Medycznego we Wrocławiu

WYKŁAD: Wtorek 13.00 – 14.30 sala wykładowa

Czwartek 07.30 – 09.00 sala wykładowa

OGÓLNY PLAN

ĆWICZEŃ

Z MIKROBIOLOGII semestr zimowy 2014-2015

Semestr zimowy 2014-2015

10 tygodni x 3 godz. = 30 h

1 tydzień x 1 godz. = 1 h

Razem: 31 h

Ćwiczenie

1. (3 godz.)

Morfologia bakterii. Metody barwienia.

Metody hodowli bakterii

06.X – 10.X. 2014

13.X – 17.X. 2014

20.X – 24.X. 2014

Ćwiczenie

2. (3 godz.)

Ziarniaki Gram-dodatnie: gronkowce

i paciorkowce

Ćwiczenie

3. (3 godz.)

Gram-ujemne pałeczki fermentujące

niefermentujące oraz bezwzględnie

beztlenowe

Ćwiczenie

4. (3 godz.)

Corynebacterium, Bacillus, Clostridium,

Actinomyces, Nocardia, Mycobacterium

27.X – 31.X. 2014

03.XI – 07.XI. 2014

17.XI – 21.XI. 2014

24.XI – 28.XI. 2014

01.XII – 05.XII. 2014

08.XII – 12.XII. 2014

Ćwiczenie

5. (3 godz.)

Bakterie spiralne

Kolokwium I (1-4)

Ćwiczenie

6. (3 godz.)

Sterylizacja i dezynfekcja.

Antybiotyki cz. I

Ćwiczenie

7. (3 godz.)

Antybiotyki cz. II. Mechanizmy oporności

Ćwiczenie

8. (3 godz.)

Choroby przenoszone drogą płciową.

Ćwiczenie

9. (3 godz.)

Flora fizjologiczna. Zaka enia górnych i

dolnych dróg oddechowych

Ćwiczenie

10. (3 godz.)

Zaka enia układu moczowego

15.XII – 19.XII. 2014

05.I – 09.I. 2015

Ćwiczenie

11 (1 godz.)

Kolokwium II (5-10)

-1-

Poniedziałek

Wtorek

Środa

Czwartek

Piątek

(I) 12.30 – 14.45 /

14a, 14b, 8a

(I) 14.30 – 16.45 /

3a, 3b, 4a

(I) 14.45 – 17.00 /

13a, 13b, 10b

(I) 13.00 – 15.15 /

1a, 1b, 2a, 2b

(I)14.00 – 16.15 /

11a, 11b, 6a, 6b

(II) 15.00 – 17.15 /

8b, 7a, 7b, 10a

(II) 16.45 – 19.00 /

12a, 12b, 4b

(II) 15.30 – 17.45 /

5a, 5b, 9a, 9b

SZCZEGÓŁOWY PLAN

ĆWICZEŃ

Z MIKROBIOLOGII semestr zimowy 2014-2015

ĆWICZENIE

1 (06.X

– 10.X. 2014)

TEMAT: MORFOLOGIA BAKTERII. METODY BARWIENIA. METODY HODOWLI

BAKTERII

Część teoretyczna:

♦

Organizacja i dyscyplina pracy w czasie

ćwiczeń

z mikrobiologii.

Typy mikroskopów u ywanych na

ćwiczeniach: świetlny,

z ciemnym polem widzenia,

fluorescencyjny.

Morfologia bakterii.

Metody barwienia preparatów mikroskopowych: barwienie proste, zło one, pozytywne, negatywne,

negatywno-pozytywne.

Warunki hodowli bakterii tlenowych i beztlenowych

in vitro.

Wpływ temperatury, pH, potencjału

oksydacyjno-redukcyjnego, egzogennych związków pokarmowych (czynników wzrostowych).

Podział podło y mikrobiologicznych (proste, wzbogacone, wybiórczo-ró nicujące, ró nicujące).

Opisywanie morfologii kolonii na wybranych podło ach.

Sporządzanie i oglądanie w mikroskopie

świetlnym

preparatów z hodowli bakterii, barwienie metodą

Grama.

Demonstracja gotowych preparatów z bakterii w mikroskopie

świetlnym,

cpw.

i fluorescencyjnym.

Demonstracja podło y bakteriologicznych oraz wzrostu bakterii w podło u płynnym i na podło ach

stałych.

Część praktyczna:

ĆWICZENIE

(13.X – 17.X. 2014)

TEMAT: ZIARNIAKI GRAM-DODATNIE: GRONKOWCE I PACIORKOWCE

Część teoretyczna:

♦

Charakterystyka i chorobotwórczość

Staphylococcus aureus, S. epidermidis, S. saprophyticus.

Charakterystyka i chorobotwórczość

Streptococcus pyogenes, S. pneumoniae, S. z gr. orale,

Enterococcus

spp.

Demonstracja hodowli na agarze z krwią, opis morfologii kolonii, rodzaje hemolizy.

Demonstracja gotowych preparatów z omawianych bakterii w mikroskopie

świetlnym.

Testy identyfikacyjne dla gronkowców: wytwarzanie katalazy, CF (wykonanie), wra liwość na

nowobiocynę i furazolidon, test koagulazowy (demonstracja), ID32 Staph do odczytu.

Testy identyfikacyjne dla paciorkowców: wra liwość na bacytracynę i optochinę, szereg

biochemiczny dla enterokoków, wykrywanie antygenów grupowych (demonstracja), Api20Strep do

odczytu.

Część praktyczna:

♦

-2-

ĆWICZENIE

(20.X – 24.X. 2014)

TEMAT: GRAM-UJEMNE PAŁECZKI FERMENTUJĄCE, NIEFERMENTUJĄCE oraz

BEZWZGLĘDNIE BEZTLENOWE

Część teoretyczna:

♦

Charakterystyka i chorobotwórczość pałeczek rodziny

Enterobacteriaceae: Salmonella, Shigella,

Escherichia coli, Proteus, Klebsiella.

Charakterystyka i chorobotwórczość pałeczek niefermentujacych:

Pseudomonas aeruginosa,

Acinetobacter baumannii, Stenotrophomonas maltophilia.

Charakterystyka i chorobotwórczość Gram-ujemnych bakterii bezwzględnie beztlenowych

(Prevotella,

Porphyromanas, Bacteroides, Fusobacterium).

Część praktyczna:

♦

Demonstracja hodowli bakterii na podło ach wybiórczych: Mac Conkey’a i SS (Enterobacteriaceae)

oraz na agarze zwykłym i Mac Conkey’a (Pseudomonas i

Acinetobacter).

Demonstracja gotowych preparatów bakteryjnych w mikroskopie

świetlnym.

Identyfikacja Gram-ujemnych pałeczek: odczyt testów ID32GN dla G(-) pałeczek. Test na

wytwarzanie oksydazy i barwników dla G(-) pałeczek niefermentujących.

Demonstracja i identyfikacja Gram-ujemnych pałeczek bezwzględnie beztlenowych: odczyt testów

ID32A.

ĆWICZENIE

(27.X – 31.X. 2014)

TEMAT:

Corynebacterium, Bacillus, Actinomyces, Nocardia, Mycobacteriun

Część teoretyczna:

♦

Charakterystyka i chorobotwórczość laseczek:

Bacillus anthracis, Clostridium tetani, Cl. difficile, Cl.

botulinum, Cl. perfringens.

Charakterystyka i chorobotwórczość maczugowców –

Corynebacterium diphtheriae.

Szczepionka DPT (diphtheria, pertussis, tetanus).

Podział taksonomiczny prątków

Charakterystyka i chorobotwórczość

Mycobacterium tuberculosis

oraz mykobakterii MOTT.

Postacie kliniczne gruźlicy, diagnostyka, szczepienia (BCG), próby tuberkulinowe

Odporność

śródzakaźna

– fenomen Kocha

Charakterystyka i chorobotwórczość

Actinomyces

spp. i

Nocardia

spp.

Demonstracja hodowli i gotowych preparatów:

Bacillus, Clostridium Corynebacterium.

Testy identyfikacyjne maczugowców (ApiCoryne).

Oglądanie preparatów plwociny od chorego prątkującego barwionych metodą Ziehl-Neelsena

(czynnik wiązkowy – cord factor).

Oznaczanie wra liwości prątków na tuberkulostatyki.

Część praktyczna:

♦

Demonstracja hodowli i gotowych preparatów

Actinomyces

spp. i

Nocardia

spp.

ĆWICZENIE

(03.XI – 07.XI. 2014)

TEMAT: BAKTERIE SPIRALNE.

KOLOKWIUM I (z

ćwiczeń

1-4)

Część teoretyczna:

♦

Charakterystyka i chorobotwórczość

Treponema pallidum, Leptospira,

Borrelia recurrentis, B. burgdorferi, Campylobacter jejuni, Helicobacter pylori.

Część praktyczna:

♦

Demonstracja hodowli

Campylobacter

Helicobacter.

-3-

♦

Demonstracja bezpośredniego preparatu z bioptatu z

H. pylori.

Demonstracja preparatu srebrzonego z

Treponema pallidum.

Demonstracja

Leptospira

w mikroskopie z ciemnym polem widzenia.

Demonstracja bezpośredniego rozmazu krwi z

B. recurrentis.

Oglądanie gotowych preparatów z

Campylobacter

Helicobacter.

ĆWICZENIE

6 (17.XI

– 21.XI. 2014)

TEMAT: STERYLIZACJA i DEZYNFEKCJA. ANTYBIOTYKI część I

STERYLIZACJA i DEZYNFEKCJA

Część teoretyczna:

♦

Omówienie metod sterylizacji i dezynfekcji oraz preparatów stosowanych w antyseptyce.

Ocena skuteczności higienicznego mycia rąk (mycie + jednokrotna dezynfekcja) - jedna płytka

agarowa dla studenta.

Część praktyczna:

ANTYBIOTYKI

Część teoretyczna:

•

Charakterystyka najwa niejszych grup antybiotyków (mechanizm i sposób działania, spektrum

przeciwbakteryjne, mechanizm(y) oporności, farmakokinetyka):

β-laktamy,

aminoglikozydy,

makrolidy i ketolidy, linkozamidy, glikopeptydy, tetracykliny, tigecyklina, polimyksyny,

oksazolidynony, fluorochinolony, sulfonamidy.

Metody oznaczania wra liwości bakterii i grzybów na antybiotyki:

- metoda krą kowo-dyfuzyjna (omówienie)

- metoda seryjnych rozcieńczeń w podło u bulionowym MH – oznaczanie MIC i MBC

(demonstracja)

- oznaczanie MIC metodą E-testu (demonstracja)

- metoda rozcieńczenia leku w po ywce Loewensteina-Jensena dla prątków gruźlicy (demonstracja )

•

Część praktyczna:

Wykonanie antybiogramu metodą krą kowo-dyfuzyjną dla wybranych szczepów bakterii:

•

Staphylococcus aureus

MRSA z ropy

•

Pseudomonas aeruginosa

MBL(+) z ropy

•

Klebsiella pneumoniae

ESBL(+) z plwociny - zapalenie płuc

ĆWICZENIE

(24.XI – 28.XI. 2014)

TEMAT: ANTYBIOTYKI część II. MECHANIZMY OPORNOŚCI

Część teoretyczna:

Omówienie wybranych mechanizmów oporności bakterii na antybiotyki: MRS, MLS

, VISA, VRSA, HLAR,

VRE, MBL, ESBL, KPC

Część praktyczna:

Odczyt i interpretacja antybiogramów z poprzedniego

ćwiczenia.

Odczyt antybiogramów przygotowanych metodą ATB dla ró nych szczepów bakterii.

Wykonanie testu z cefinazą – wykrywanie beta-laktamaz u

Moraxella.

Demonstracja antybiogramu

Enterococcus faecalis

HLAR z krwi (zapalenie wsierdzia)

Demonstracja antybiogramu

Enterococcus faecalis

VRE –E test

Demonstracja testu do wykrywania MBL

Demonstracja E-testu do wykrywania ESBL

Demonstracja E-testu do wykrywania MBL

Demonstracja testu do wykrywania KPC

Nosicielstwo

S. aureus

– antybiogram

-4-

ĆWICZENIE

(01.XII – 05.XII. 2014)

TEMAT: CHOROBY PRZENOSZONE DROGĄ PŁCIOWĄ

Część teoretyczna

•

Omówienie zaka eń przenoszonych drogą płciową oraz czynników etiologicznych STD.

Część praktyczna –

ćwiczenie

demonstracyjne

•

Diagnostyka kiły:

USR i TPHA do odczytu i interpretacji

FTA-ABS i ELISA do omówienia

preparat srebrzony z tkanki mózgowej

•

Diagnostyka rze

ączki

(GU):

hodowla gonokoków na podło u Roiron

wykonanie testu na oksydazę

demonstracja preparatu z ropy rze

ączkowej

omówienie testu przesiewowego

Gonoline Duo 2

•

Diagnostyka rzęsistkowicy:

- demonstracja preparatu z

Trichomonas vaginalis

(Giemsa)

•

Diagnostyka NGU:

hodowla

Mycoplasma hominis

Mycoplasma

IST-test do odczytu i interpretacji

Chlamydia trachomatis

(zaka ona linia komórkowa Mc Coy

’

a - zdjęcie)

•

Diagnostyka grzybicy dróg rodnych.

Opracowanie materiałów diagnostycznych do następnego ćwiczenia: ZAKAŻENIA GÓRNYCH

I DOLNYCH DRÓG ODDECHOWYCH

1. wymaz z gardła

(podejrzenie anginy paciorkowcowej)

2. plwocina

(zapalenie płuc, pacjent ambulatoryjny)

3. wydzielina z drzewa oskrzelowego + krew

(pacjent hospitalizowany – OIOM)

ĆWICZENIE

(08.XII – 12.XII. 2014)

TEMAT: FLORA FIZJOLOGICZNA. ZAKA ENIA GÓRNYCH I DOLNYCH

DRÓG ODDECHOWYCH

Część teoretyczna:

♦

Omówienie roli flory endogennej człowieka.

Omówienie postaci klinicznych oraz etiologii zaka eń górnych i dolnych dróg oddechowych.

Schemat badania mikrobiologicznego. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania.

Część praktyczna:

♦

Odczyt posiewów próbek z zaka eń dróg oddechowych:

wymaz z gardła

(angina paciorkowcowa)– preparat mikroskopowy barwiony, metodą Grama

(wykonanie), test wra liwości na bacytracynę (demonstracja). Test do wykrywania Ag

pyogenes

plwocina

(zapalenie płuc, pacjent pozaszpitalny) –preparat mikroskopowy barwiony metodą

Grama (wykonanie), test z optochiną (demonstracja), antybiogram.

wydzielina z drzewa oskrzekowego + krew

(pacjent hospitalizowany – OIOM)– preparat

mikroskopowy barwiony metodą Grama (wykonanie), odczyt testu ID32GN, antybiogram.

♦

Demonstracja hodowli wybranych patogenów górnych dróg oddechowych:

Staphylococcus aureus,

Corynebacterium diphtheriae.

Demonstracja bezpośredniego z wymazu z gardła chorego na anginę

Plauta-Vincenta.

-5-

Plik z chomika:

Mateusssz

Inne pliki z tego folderu:

Mikrobiologia - wymagania - egzamin.pdf (141 KB)
Mikrobiologia - ćwiczenia.pdf (120 KB)

Mikrobiologia - ćwiczenia.pdf

Plik z chomika:

Inne pliki z tego folderu:

Inne foldery tego chomika: